(3 révisions intermédiaires par le même utilisateur non affichées) | |||
Ligne 34 : | Ligne 34 : | ||
− | ''' | + | '''Culture en gélose''' '''(10 géloses)''' |
− | * | + | *10 boîtes de Petri |
− | * | + | *200 mL d'eau |
*300 g de pommes de terre | *300 g de pommes de terre | ||
*4 g d'agar agar | *4 g d'agar agar | ||
− | * | + | *8 g de sucre de betterave |
+ | *4-5 champignons idéalement pas trop vieux (nombre dépend de la variété) | ||
+ | |||
+ | '''Culture liquide (2 bocaux)''' | ||
+ | |||
+ | *2 bocaux avec couvercle à vis (0,5 L) | ||
+ | *2 bouchons auto refermables ([https://www.amazon.fr/Biomed-Scientific-bouchons-caoutchouc-bouteilles/dp/B08GK9N8BJ/ref=pd_bxgy_d_sccl_1/260-6564371-7724318?pd_rd_w=XT42Q&content-id=amzn1.sym.3dbb4249-7cc8-4963-a362-854c36cc0919&pf_rd_p=3dbb4249-7cc8-4963-a362-854c36cc0919&pf_rd_r=J7WB exemple]) | ||
+ | *2 disques filtrants synthétiques ([https://www.amazon.fr/filtrants-synthétiques-diamètre-hydrophobe-champignons/dp/B09LD119PF/ref=pd_day0_d_sccl_3_2/260-6564371-7724318?pd_rd_w=zpX3b&content-id=amzn1.sym.cc48ab04-3796-4439-b087-8d6b2a0f04cc&pf_rd_p=cc48ab04-3796-4439-b087-8d6b2a0f04cc&pf_r exemple]) | ||
+ | *2 barreau agitateurs aimantés ([https://www.servilab.fr/catalogue/produits/barreau-aimante-cylindrique-en-ptfe-sans-anneau exemple]) + agitateur magnétique ([https://www.lecomptoirdubrasseur.fr/fermentation/materiels-de-laboratoire/agitateurs-magnetique/agitateur-magnetique-3000-tr-min/ exemple]) ou 1 pièce de monnaie pour remplacer les 2 éléments précédents (mais technique moins fiable) | ||
+ | *2 seringues stériles de 10 mL avec aiguilles rose de 18G ([https://www.pmd-medical.com/50-948-aiguille-hypodermique-18-a-27g-bd-microlance-3.html?utm_source=google&utm_medium=cpc&utm_campaign=top-roas&gad_source=1&gbraid=0AAAAAo-e_mU3BR6pULBClfOQSeMiAk-l4&gclid=CjwKCAiAxKy5BhBbEiwAYiW--xudCqVWWtveTFitg0N8TNAtfTv- exemple aiguille]) | ||
+ | |||
+ | '''Inoculation des grains''' '''(2 sacs)''' | ||
+ | |||
+ | *2 sacs de culture | ||
+ | *2x 1,4 kg de grains de seigle | ||
+ | *2x 7 g de chaux éteinte | ||
+ | *2x 800 mL d'eau</translate> | ||
|Tools=<translate>Ceci est une liste d'outils exhaustive à adapter en fonction de ce que vous possédez déjà. | |Tools=<translate>Ceci est une liste d'outils exhaustive à adapter en fonction de ce que vous possédez déjà. | ||
<br /> | <br /> | ||
− | * | + | *Une perçeuse avec forets |
− | |||
*Un autoclave ou une cocotte minute avec manomètre | *Un autoclave ou une cocotte minute avec manomètre | ||
*Un scalpel | *Un scalpel | ||
Ligne 84 : | Ligne 99 : | ||
}} | }} | ||
{{Tuto Step | {{Tuto Step | ||
− | |Step_Title=<translate>Préparation des boîtes de | + | |Step_Title=<translate>Culture en gélose</translate> |
− | |Step_Content=<translate> | + | |Step_Content=<translate>Les étapes suivantes montrent comment réaliser plusieurs boîtes de Petri nécessaires pour inoculer les grains de seigle.</translate> |
− | + | }} | |
− | <br /> | + | {{Tuto Step |
+ | |Step_Title=<translate>Préparation des boîtes de Petri</translate> | ||
+ | |Step_Content=<translate><br /> | ||
*Faites cuire 300 g de pomme de terre préalablement découpées dans 1 L d'eau pendant 1 h | *Faites cuire 300 g de pomme de terre préalablement découpées dans 1 L d'eau pendant 1 h | ||
*Filtrez le jus de pommes de terre et conservez le jus filtré dans un récipient | *Filtrez le jus de pommes de terre et conservez le jus filtré dans un récipient | ||
− | *Dans un récipient, mélangez 200 mL d’eau, 40 g de jus de pommes de terre, 4 g d’agar agar et | + | *Dans un récipient, mélangez 200 mL d’eau, 40 g de jus de pommes de terre, 4 g d’agar agar et 8 g de sucre de betterave jusqu'à obtenir une solution homogène (voir photo 1) |
− | * | + | *Faîtes chauffer la préparation et lorsque l'ébullition est atteinte, éteignez le feu (voir photo 2) |
− | * | + | *Filtrez la préparation puis versez-la dans les 10 boîtes de Petri afin d’avoir une gélose de 2 à 3 mm d’épaisseur (voir photo 3) |
*Laissez refroidir la gélose jusqu’à ce qu’elle prenne (elle doit être figée et pas liquide) | *Laissez refroidir la gélose jusqu’à ce qu’elle prenne (elle doit être figée et pas liquide) | ||
− | *Placez 3 boîtes de | + | *Placez 3 boîtes de Petri superposées au centre de votre feuille d'aluminium puis emballez-les (voir photo 4 et 5). Il est important que l'aluminium se referme sur le dessus des boîtes de Petri. Réalisez la même opération avec les boîtes de Petri restantes</translate> |
|Step_Picture_00=Biosph_re_Urbaine_-_Cl_nage_de_champignons_Capture_d_e_cran_2024-10-23_a_10.45.49.png | |Step_Picture_00=Biosph_re_Urbaine_-_Cl_nage_de_champignons_Capture_d_e_cran_2024-10-23_a_10.45.49.png | ||
|Step_Picture_01=Biosph_re_Urbaine_-_Cl_nage_de_champignons_Capture_d_e_cran_2024-10-23_a_10.48.00.png | |Step_Picture_01=Biosph_re_Urbaine_-_Cl_nage_de_champignons_Capture_d_e_cran_2024-10-23_a_10.48.00.png | ||
Ligne 103 : | Ligne 120 : | ||
}} | }} | ||
{{Tuto Step | {{Tuto Step | ||
− | |Step_Title=<translate>Stérilisation des boîtes de | + | |Step_Title=<translate>Stérilisation des boîtes de Petri</translate> |
|Step_Content=<translate>'''Stérilisation à la cocotte minute avec manomètre''' | |Step_Content=<translate>'''Stérilisation à la cocotte minute avec manomètre''' | ||
*Placez un panier vapeur à l'envers à l'intérieur de la cocotte minute | *Placez un panier vapeur à l'envers à l'intérieur de la cocotte minute | ||
*Versez de l'eau jusqu'à 2 mm du haut du panier vapeur | *Versez de l'eau jusqu'à 2 mm du haut du panier vapeur | ||
− | *Disposez les 3 blocs de boîte de | + | *Disposez les 3 blocs de boîte de Petri sur le panier vapeur. Il ne faut pas que les boîtes de Petri baignent dans l'eau (voir photo 1) |
− | *Fermez le couvercle de la cocotte minute puis chauffez le tout pour stériliser les boîtes de | + | *Fermez le couvercle de la cocotte minute puis chauffez le tout pour stériliser les boîtes de Petri pendant 1h à 121°C (voir photo 2). Utilisz un manomètre pour contrôler la température (il n'est pas visible sur notre photo) |
*Une fois la stérilisation finie, ouvrez la cocotte et laissez refroidir dans un environnement propre et le plus stérile possible. Ici, nous réalisons ces étapes dans le ChampiLab mis en place dans le cadre de notre projet. La cocotte minute est placée devant le flux laminaire (voir photo 6) qui permet de réduire les risques de contamination (voir tutoriel Biosphère Urbaine - ChampiLab) | *Une fois la stérilisation finie, ouvrez la cocotte et laissez refroidir dans un environnement propre et le plus stérile possible. Ici, nous réalisons ces étapes dans le ChampiLab mis en place dans le cadre de notre projet. La cocotte minute est placée devant le flux laminaire (voir photo 6) qui permet de réduire les risques de contamination (voir tutoriel Biosphère Urbaine - ChampiLab) | ||
Ligne 115 : | Ligne 132 : | ||
*Versez de l'eau jusqu'à 2 mm du haut du plateau | *Versez de l'eau jusqu'à 2 mm du haut du plateau | ||
− | *Disposez les 3 blocs de boîte de | + | *Disposez les 3 blocs de boîte de Petri sur le plateau. Il ne faut pas que les boîtes de Pétri baignent dans l'eau (voir photo 3) |
− | *Fermez le couvercle de l'autoclave (voir photo 4) puis branchez-le pour stériliser les boîtes de | + | *Fermez le couvercle de l'autoclave (voir photo 4) puis branchez-le pour stériliser les boîtes de Petri pendant 1h à 121°C (voir photo 5) |
*Une fois la stérilisation finie, ouvrez l'autoclave et laissez refroidir dans un environnement propre et le plus stérile possible. Ici, nous réalisons ces étapes dans le ChampiLab mis en place dans le cadre de notre projet. L'autoclave est placé devant le flux laminaire (voir photo 6) qui permet de réduire les risques de contamination (voir tutoriel Biosphère Urbaine - ChampiLab)</translate> | *Une fois la stérilisation finie, ouvrez l'autoclave et laissez refroidir dans un environnement propre et le plus stérile possible. Ici, nous réalisons ces étapes dans le ChampiLab mis en place dans le cadre de notre projet. L'autoclave est placé devant le flux laminaire (voir photo 6) qui permet de réduire les risques de contamination (voir tutoriel Biosphère Urbaine - ChampiLab)</translate> | ||
|Step_Picture_00=Biosph_re_Urbaine_-_Cl_nage_de_champignons_Capture_d_e_cran_2024-10-23_a_10.46.16.png | |Step_Picture_00=Biosph_re_Urbaine_-_Cl_nage_de_champignons_Capture_d_e_cran_2024-10-23_a_10.46.16.png | ||
Ligne 126 : | Ligne 143 : | ||
}} | }} | ||
{{Tuto Step | {{Tuto Step | ||
− | |Step_Title=<translate> | + | |Step_Title=<translate>Clonage du champignon</translate> |
− | |Step_Content=<translate>'''Le | + | |Step_Content=<translate>'''Le clonage''' est une étape délicate car elle nécessite un espace propre et stérile pour éviter les contaminations. Dans le cadre du projet, nous avons monté un ChampiLab, un atelier partagé où l'on retrouve tout le matériel nécessaire pour réaliser du clonage. Notamment, nous avons fabriqué un flux laminaire avec l'entreprise Breizh Bell, spécialiste de la culture de champignons dans une démarche low-tech (voir tutoriel Biosphère Urbaine - ChampiLab). '''Le clonage peut se réaliser avec toute variété de champignons, idéalement pas trop vieux : un jeune champignon aura une croissance plus rapide. Dans le cadre du projet nous avons généralement cloner des pleurotes.''' |
<br /> | <br /> | ||
− | *Lorsque vous rentrez dans le ChampiLab, mettez une blouse de laboratoire, une charlotte sur la tête, un masque, des gants hygiéniques, des | + | *Lorsque vous rentrez dans le ChampiLab, mettez une blouse de laboratoire, une charlotte sur la tête, un masque, des gants hygiéniques, des sur-chaussures (voir photo 1) |
*Nettoyez les surfaces de travail et le filtre du flux laminaire avec un tissu propre imbibé d'alcool à 70°C (voir photo 1) | *Nettoyez les surfaces de travail et le filtre du flux laminaire avec un tissu propre imbibé d'alcool à 70°C (voir photo 1) | ||
− | *Récupérez les blocs de boîte de | + | *Récupérez les blocs de boîte de Petri avec des gants résistants à la chaleur et laissez-les refroidire devant le flux laminaire (voir photo 2) |
*Pendant ce temps, allumez la lampe à alcool et nettoyez à nouveau vos gants, les surfaces de travail et aspergez le champignon d'alcool à 70°C (voir photo 3) | *Pendant ce temps, allumez la lampe à alcool et nettoyez à nouveau vos gants, les surfaces de travail et aspergez le champignon d'alcool à 70°C (voir photo 3) | ||
− | *Prenez le pieds du champignon puis | + | *Prenez le pieds du champignon puis cassez-le en 2 dans le sens de la longueur avec vos doigts (voir photo 4). Vous pouvez placer une moitié de champignons de côté : la zone d'intérêt sur le dessus proche du flux laminaire pour éviter toute contamination. Vous allez à présent manipuler l'autre moitié de champignons. |
*Désinfectez le scalpel et passez sa lame dans la flamme afin de la stériliser (voir photo 4) | *Désinfectez le scalpel et passez sa lame dans la flamme afin de la stériliser (voir photo 4) | ||
*A l’aide de la lame du scalpel, coupez un carré de 5 mm de côté dans le cœur du champignon sous le chapeau, au niveau du pied (voir photo 4) | *A l’aide de la lame du scalpel, coupez un carré de 5 mm de côté dans le cœur du champignon sous le chapeau, au niveau du pied (voir photo 4) | ||
{{Warning|La lame du scalpel ne doit pas toucher l’enveloppe externe du pleurote, celle-ci n’est pas stérile}} | {{Warning|La lame du scalpel ne doit pas toucher l’enveloppe externe du pleurote, celle-ci n’est pas stérile}} | ||
− | *Gardez le morceau de champignon sur le scalpel, ouvrez le couvercle d'une des boîtes de | + | *Gardez le morceau de champignon sur le scalpel, ouvrez le couvercle d'une des boîtes de Petri, et placez le morceau de champignon au centre de la gélose (voir photo 5) |
− | *Refermez la boîte de | + | *Refermez la boîte de Petri et sceller avec le parafilm pour éviter les contaminations par l’air. Appliquez une extrémité du parafilm sur un bord de la boîte de Pétri puis tirez le parafilm pour le déposer sur toute la circonférence (voir photo 5). Il faut que le parafilm recouvre bien l'ouverture créée par le couvercle (voir photo 6) |
− | *Placez vos boîtes de | + | *Placez vos boîtes de Petri dans un environnement sombre et ventilé comme un placard. Le développement du mycélium prendra quelques jours</translate> |
− | |||
− | |||
− | |||
|Step_Picture_00=Biosph_re_Urbaine_-_Cl_nage_de_champignons_Capture_d_e_cran_2024-10-23_a_11.17.59.png | |Step_Picture_00=Biosph_re_Urbaine_-_Cl_nage_de_champignons_Capture_d_e_cran_2024-10-23_a_11.17.59.png | ||
|Step_Picture_01=Biosph_re_Urbaine_-_Cl_nage_de_champignons_Capture_d_e_cran_2024-10-23_a_11.16.14.png | |Step_Picture_01=Biosph_re_Urbaine_-_Cl_nage_de_champignons_Capture_d_e_cran_2024-10-23_a_11.16.14.png |
Tutorial de Biosphère Expérience | Catégories : Habitat, Alimentation
Ce tutoriel a été créé dans le cadre de l'expérience de mode de vie low-tech en ville menée par Biosphère Expérience à Boulogne Billancourt. Il présente les étapes de confection de mycélium en grains par la filière dédiée à la culture de champignons.
Ce tutoriel a été créé dans le cadre de l'expérience de mode de vie low-tech en ville menée par Biosphère Expérience à Boulogne Billancourt. Il présente les étapes de confection de mycélium en grains par la filière dédiée à la culture de champignons.
Le projet - Biosphère Urbaine
Pendant 4 mois, Corentin et Caroline ont expérimenté un mode de vie low-tech en ville en collaboration avec un réseau d'acteurs locaux. L'idée est de profiter de la forte densité de population pour répartir les connaissances, diviser le travail et mutualiser le matériel. Ainsi, Emma a constitué et coordonné des filières temporaires composées de structures locales mais aussi de citoyens. Au total, ce sont 14 personnes du territoire de Boulogne Billancourt qui ont participé à cette expérience !
Filière - culture de pleurotes
Les champignons sont délicieux et nutritifs, mais leur coût élevé sur le marché pose souvent un défi financier. Pour résoudre ce problème, Emma a créé une filière temporaire de culture de pleurotes qui assure tout le cycle de reproduction. À partir de pellets de paille et de mycélium en grains confectionnés au ChampiLab, Viriginie, Laurine, Corentin et Caroline ont reconstitué tout le cycle de culture du pleurote. L’idée est de mutualiser un espace pour créer des ateliers de confection des tours de culture mais aussi pour stocker le matériel et les tours pendant la phase d'incubation. Ce tutoriel vise à démocratiser la culture de pleurotes à l'échelle d'un territoire.
Déroulé de l'organisation durant l'expérience :
Ceci est une liste de matériaux exhaustive. Si vous avez déjà certains éléments, nous vous conseillons de favoriser la seconde main et d’adapter les dimensions et tailles tout au long du tuto.
Culture en gélose (10 géloses)
Culture liquide (2 bocaux)
Inoculation des grains (2 sacs)
Ceci est une liste d'outils exhaustive à adapter en fonction de ce que vous possédez déjà.
Si vous souhaitez monter une filière de ce type, il vous faudra trouver un espace partagé sur le territoire et des voisins motivés pour participer à la filière. Bien évidement, je vous invite à adapter cette filière selon vos besoins et l'organisation qui vous va le mieux.
Comment trouver un espace partagé ?
Il me fallait trouver un endroit avec plusieurs espaces : un laboratoire, un local de stockage et un espace atelier. En prospectant sur le territoire, j'ai cherché des lieux déjà existants comme un biolab (laboratoire collaboratif pour explorer le vivant) ou des espaces de la ville. Dans notre cas, il n'existe pas de Biolab à Boulogne Billancourt ce qui m'a amené à discuter avec la ville pour trouver le bon espace : la Maison de la Planète.
Comment trouver des personnes pour monter une filière ?
De mon côté, j'ai largement diffusé l'information via les réseaux de la ville (site internet, article dans le journal de la ville), nos réseaux sociaux ou encore les associations du territoire en les contactant par mail et par téléphone. Quelques exemples d'associations : Shifters, Ville en transition, Low-tech Lab..
Plus généralement, j'ai parlé du projet à toutes les personnes que je rencontrai au quotidien. Si vous souhaitez en parler à votre entourage, à vos amis, à vos collègues, je vous invite à utiliser toute la documentation présente sur ce tutoriel pour vous sentir capable de présenter les objectifs et intérêts de monter une telle filière à l'échelle du territoire.
Par ailleurs, 250 citoyens en France et à l'étranger ont expérimenté la culture de pleurotes dans le cadre du programme de sciences participatives. N'hésitez pas à rejoindre les groupes WhatsApp mis en place durant l'expérience! Vous trouverez peut être des personnes, proche de chez vous, intéressées pour monter cette filière.
Suivant le montage que vous choisissez et votre utilisation du réemploi, nous estimons entre 10 et 20 euros le coût pour réaliser un sac de mycélium en grains. Cela dépend de...
Avant de faire vos achats, nous vous conseillons fortement de lire en entier le tutoriel. Nous vous encourageons à réaliser des achats groupés pour éviter le gaspillage et partager les éventuels frais de livraison.
Les étapes suivantes montrent comment réaliser plusieurs boîtes de Petri nécessaires pour inoculer les grains de seigle.
Stérilisation à la cocotte minute avec manomètre
Stérilisation à l'autoclave
Le clonage est une étape délicate car elle nécessite un espace propre et stérile pour éviter les contaminations. Dans le cadre du projet, nous avons monté un ChampiLab, un atelier partagé où l'on retrouve tout le matériel nécessaire pour réaliser du clonage. Notamment, nous avons fabriqué un flux laminaire avec l'entreprise Breizh Bell, spécialiste de la culture de champignons dans une démarche low-tech (voir tutoriel Biosphère Urbaine - ChampiLab). Le clonage peut se réaliser avec toute variété de champignons, idéalement pas trop vieux : un jeune champignon aura une croissance plus rapide. Dans le cadre du projet nous avons généralement cloner des pleurotes.
Lorsque le mycélium s'est bien développé dans les boîtes de Pétri (voir photo 1), vous pouvez préparer les grains avant inoculation. Pour rappel, ce tutoriel est prévu pour réaliser 3 sacs de 1,7 kg de mycélium en grains chacun. Adaptez les indications selons le nombre de sac que vous souhaitez réaliser.
Pour chacun de sacs de culture :
Document rédigé par Emma Bousquet-Pasturel dans le cadre de programme de sciences participative de Biosphère Expérience.
fr none 0 Draft
Vous avez entré un nom de page invalide, avec un ou plusieurs caractères suivants :
< > @ ~ : * € £ ` + = / \ | [ ] { } ; ? #